小分子化合物Pull Down实验案例

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服务概述

小分子化合物Pull Down实验案例

摘要

小分子pulldown是一种获取小分子结合靶标蛋白质的实验技术。大致的实验过程为:

1、针对小分子进行脱硫生物素偶联标记;对于结构特殊的小分子化合物,有时需要进行衍生化反应增加偶联位点。
2、提取细胞总蛋白或核蛋白。如果需要分离单独的亚细胞器蛋白,需提前注明。
3、将提取物与偶联后小分子孵育后与链霉亲和素偶联磁珠亲和结合,洗涤去除非特异性结合蛋白分子;洗涤洗脱得到的蛋白产物,通过银染SDS-PAGE检测实验组与对照组的差异情况;达到分离要求的蛋白胶条,通过质谱鉴定即可筛选出与小分子片段可能互作的蛋白信息。



一、试剂和耗材

样品:1个样品

主要试剂:

试剂名称 试剂来源 Cat.No.
Pierce™ IP 裂解缓冲液 Thermo 87787
BCA Protein Quantification Kit Vazyme E112-01
Bioeast Mag-SA 博岳生物 M1000S
Complete ULTRA Tablets,Mini,蛋白酶抑制剂混合物 Roche 05892970001
Protein Marker Thermo 26616
过硫酸铵 南京试剂 7727-54-0
TEMED Sigma T8090
Tris Sigma T8060
SDS Sigma S8010
丙烯酰胺 Sigma V900845
N,N'-亚甲基双丙烯酰胺 Sigma V900301
快速银染试剂盒 碧云天 P0017S
生物素 阿拉丁 B105434-25g
CDI 阿拉丁 C109314
0.22 μm无菌滤器 Millipore KHVES10HH1
透析袋 Millipore D6191
其它试剂均为国产分析纯。



二、主要实验仪器

仪器名称 来源 Cat.No.
全自动样品快速研磨仪 上海净信 Tissuelyser-48
电泳仪 南京普阳 DYY-7C
电泳槽 北京君意 JY-SPCT
超净工作台 上海上净 CA-1390-1
台式高速离心机 湘仪 H1650-W
台式高速冷冻离心机 湘仪 TGL-16
蛋白电泳仪 北京君意 JY300HC
蛋白电泳槽 Tanon VE-186
移液器 Eppendorf 2.5 µl/100 µl/ 200µl/1000 µl
NANODROP2000 Thermo NANODROP2000



三、实验方法及结果

3.1 小分子偶联反应实验方法及结果(示意图)

小分子偶联反应实验方法及结果

(1)小分子活化

将6mg小分子溶解于1mL吡啶溶剂中,加入10mg活化剂CDI,室温搅拌1小时,向其中加入50μL去离子水淬灭过量的CDI,得到活化产物。

(2)偶联生物素

取氨基生物素5mg在1mLDMSO中溶解,然后加入到上述活化试剂中,室温搅拌6小时。TLC监测反应进程,待反应完成后,过硅胶柱层析纯化得产物小分子-生物素。


3.2 小分子扫描检测结果

对未偶联小分子及偶联后小分子进行波长扫描
鉴定方法:紫外扫描(001-生物素-绿色,化合物001-黑色)

小分子扫描检测结果


核磁氢谱

小分子扫描检测结果

质谱

小分子扫描检测结果

3.3 总蛋白的提取

(1)将20-100mg组织切成小块,放入离心管中;
(2)用PBS清洗组织,以5000 rpm离心组织5分钟;
(3)使用移液枪小心移除并丢弃上清液,使细胞颗粒尽可能干燥;
(4)将组织样品放入2ml离心管中置于液氮中2-3min,然后用液氮研磨成粉末状,使用Donce均质机或组织研磨机将组织打成粉末;
(5)采用Pierce™ IP 裂解缓冲液(Thermo,货号:87787)提取蛋白,加入cOmplete ULTRA Tablets,Mini,蛋白酶抑制剂混合物(Roche ,货号:05892970001),涡旋使样品完全悬浮,将离心管在冰上裂解15分钟;
(6)在离心机中4℃(16000×g)以最大速度离心20分钟,收取上清;
(7)在使用前,储存在-80℃。
采用BCA法检测蛋白浓度。



3.4 总蛋白银染

总蛋白银染

图1 SDS-PAGE检测分析图
Fig.1 SDS-PAGE detection analysis
Lane M: Protein Marker
Lane 1: 总蛋白

3.5小分子与蛋白互作

实验具体分组如下:

编号 1 2 3
001 - + -
001-生物素 + - -
游离生物素 - +
总蛋白 + + +
Bioeast Mag-SA + + +

(1)预先混合2.5µg小分子和100 µg总蛋白,置于冰上;
(2)取50 µl Bioeast Mag-SA,用冰冷PBS洗3次,置于磁力架上分离磁珠和液体,小心的移去上清;
  (3)将小分子与蛋白的混合物加到Bioeast Mag-SA中,重悬珠子; 
(4)4℃孵育1小时; 
(5)置于磁力架上分离磁珠和液体,小心的移去上清,收集磁珠;
  (6)用冰冷PBS洗Bioeast Mag-SA三次,置于磁力架上分离磁珠和液体,尽可能去除上清,收集磁珠;
(7)加入30 µl蛋白上样缓冲液,重悬沉淀,沸水煮10分钟。



3.6SDS-PAGE检测

(1) 样品制备:样品中加入Loading Buffer,100°C 10 min。
(2) 电泳条件:5%浓缩胶:90 V,30 min;10%分离胶:120V,90 min。
(3) 电泳结束后进行银染,拍照记录跑胶图片用于分析。



3.7实验结果

实验结果

图2 SDS-PAGE检测分析图
Fig.2 SDS-PAGE detection analysis
Lane M: Protein Marker
Lane 1: 001-生物素+Bioeast Mag-SA+核蛋白
Lane 2: 游离001+游离生物素+Bioeast Mag-SA+核蛋白
Lane 3: Bioeast Mag-SA+核蛋白

SDS-PAGE银染结果如上,如需要进一步确认,建议进行后续的LC-MS鉴定。



四、质谱检测:略


五、实验步骤

5.1 蛋白酶解

(1)切胶:将蛋白条带切出后放入EP管中;
(2)水洗:加入MilliQ水wash 1min,离心去上清,水洗2次;
(3)脱色:加入50%MeOH/50mM NH4HCO3于37°恒温箱内脱色30min,离心去上清;
(4)脱水:加入100% ACN ,震荡30s等胶粒变白后吸出液体;
(5)烷基化:往干燥胶粒中加入25 mM DTT/ 50 mM NH4HCO3,于 56度反应30min,吸出DTT,加入55 mM IAA / 50mM NH4HCO3,室温暗处反应30min;
(6)水洗:将IAA吸出,加入MilliQ水wash 3次;
(7)脱水:100% ACN脱水至胶粒变白;
(8)酶切:用25 mM NH4HCO3稀释胰酶至20ng/µl;于每管加入适量胰酶,冰浴30min;再补加适量25 mM NH4HCO3至覆盖胶粒,放入37度恒温箱酶切过夜;
肽段提取:将EP管盒整个放入超声仪中超声15-20min,吸出肽段于新的EP管。


5.2 肽段纯化ZipTip

(1)润湿柱子:吸10µl 100% ACN,弃之,重复两次;
(2)酸化柱子:吸10µl 0.1% TFA,弃之,重复两次;
(3)吸附样本:吹吸样本15次;
(4)除杂质:吸10µl 0.1% TFA,弃之,重复两次;
(5)洗脱样本:吸10µl 0.1% TFA-,700% ACN,将此洗脱液转入新EP管;
(6)真空抽干。


5.3 质谱检测

(1)肽段用样品溶解液(0.1%甲酸、2%乙腈)溶解, 13200rpm,4℃离心20min,取上清,进行质谱鉴定;

(2)液相参数

(a)色谱柱信息:
300 um idx 5mm, Acclaim PepMap RSLC C18, 5 um, 100Å, (Thermo,160454)
Acclaim PepMap 75um X 150mm,C18,3um,100A(Thermo,160321)

(b)流动相信息
流动相A:0.1%甲酸
流动相B:0.1%甲酸,80%ACN
流速:300nL/min

(c)分析时间:65min

有效梯度:B相从5%上升至90%

时间 B相
0 5%
5 5%
45 50%
50 90%
55 90%
65 5%

(3)质谱参数

分离后的肽段直接进入质谱仪Thermo Scientific Q Exactive进行在线检测,具体参数如下:

(a)一级质谱参数
Resolution:70,000
AGC target:3e6
Maximum IT:40 ms
Scan range:350 to 1800 m/z


(b)二级质谱参数
Resolution:17,500
AGC target:1e5
Maximum IT: 60 ms
TopN :20
NCE / stepped NCE:27


5.4 数据库检索

质谱原始文件经过MM File Conversion软件处理转换,得到MGF格式文件,然后用MASCOT(http://www.matrixscience.com/)检索uniprot数据库,检索参数如下:

项目 参数
固定修饰(Fixed modifications) Carbamidomethyl (C)
可变修饰(Variable modifications) Oxidation (M)
酶(Enzyme) Trypsin
遗漏酶切位点(Maximum Missed Cleavages) 1
一级质谱误差(Peptide Mass Tolerance) 20ppm
二级质谱误差(Fragment Mass Tolerance) 0.6Da
肽段/碎片离子质量数(Mass values) Monoisotopic(单同位素)
显著性阈值(Significance threshold) 0.05

本实验检索比对数据库:Homo sapiens:https://www.uniprot.org/taxonomy/9606



六、实验结果

6.1 结果文件

本实验结果文件主要包含:
(1)Peptide Summary Report. html
(2)检索结果表格. xlsx


6.2 结果主要参数解释

excel表格包括以下4个子表格:

子表格命名 解释说明
不过滤-原始结果 未经过筛选的原始结果,包括匹配上蛋白和肽段具体信息
不过滤-鉴定及定量蛋白列表 未经过筛选后蛋白列表
0.05过滤-蛋白肽段列表 经过筛选后的原始结果,包括匹配上的蛋白和肽段具体信息,筛选条件为:pep_expect<0.05
0.05过滤-鉴定及定量蛋白列表 经过筛选后的蛋白列表,筛选条件为:pep_expect<0.05

蛋白列表参数说明:

参数 说明
prot_hit_num 蛋白编号
prot_acc 蛋白登录号
prot_desc 蛋白描述信息
以Myosin-9 OS=Homo sapiens OX=9606 GN=MYH9 PE=1 SV=4为例:
Myosin-9:蛋白名称;
OS:Organism,表示检索物种的拉丁名;
GN:gene name,表示该基因名是MYH9;
PE:ProteinExistence,表示蛋白可靠性,分5个等级,数据越小代表可靠性越高;
SV:sequenceVersion,表示蛋白序列版本。
prot_score 蛋白得分
prot_mass 蛋白质量
prot_matches 匹配上的二级谱图数
prot_matches_sig 得分高于阈值的二级谱图数
prot_sequences 匹配上的肽段数
prot_sequences_sig 得分高于阈值的肽段数
prot_cover 蛋白覆盖度(鉴定到的氨基酸数目占氨基酸总数的比例)
prot_pi 蛋白等电点
prot_seq 蛋白序列
emPAI 蛋白丰度指数,指示该蛋白在该样本中所占的丰度大小,数值越大,丰度越高,只能做组内比较,不用于组间比较

肽段列表参数说明:

参数 说明
prot_hit_num 蛋白编号
prot_acc 蛋白登录号
prot_desc 蛋白描述信息
prot_score 蛋白得分
prot_mass 蛋白质量
prot_matches 匹配上的二级谱图数
prot_matches_sig 得分高于阈值的二级谱图数
prot_sequences 匹配上的肽段数
prot_sequences_sig 得分高于阈值的肽段数
prot_cover 蛋白覆盖度(鉴定到的氨基酸数目占氨基酸总数的比例)
prot_pi 蛋白等电点
pep_query 二级谱的提交编号
pep_rank 肽段在二级谱中的排名
pep_isbold 1表示该肽段更可信
pep_isunique 是否是unique肽段(1为是,0为否)
pep_exp_mz 肽段质荷比
pep_exp_mz 肽段质荷比
pep_exp_mr 肽段实际质量
pep_exp_z 肽段电荷数
pep_calc_mr 肽段理论质量
pep_delta 肽段质量偏差
pep_miss 漏切位点
pep_score 肽段得分,得分越高表示该肽段越可信
pep_expect 肽段得分期望值
pep_res_before 在此肽段之前的氨基酸
pep_seq 肽段序列
pep_res_after 在此肽段之后的氨基酸
pep_var_mod 可变修饰类型
var_mod_pos 可变修饰位点,例如某肽段对应的肽段序列为QGFPNR,可变修饰类型为Oxidation (M),修饰位点为0.010000.0,其中“.”代表酶切位点,0代表未修饰氨基酸,1代表修饰氨基酸,说明该肽段序列中G发生了Oxidation (M)修饰
pep_scan_title 二级谱扫描编号


部分结果展示:

prot_acc prot_desc
sp|P08779|K1C16_HUMAN Keratin, type I cytoskeletal 16 OS=Homo sapiens OX=9606 GN=KRT16 PE=1 SV=4
sp|Q6P5R6|RL22L_HUMAN 60S ribosomal protein L22-like 1 OS=Homo sapiens OX=9606 GN=RPL22L1 PE=1 SV=2
sp|P52926|HMGA2_HUMAN High mobility group protein HMGI-C OS=Homo sapiens OX=9606 GN=HMGA2 PE=1 SV=1
sp|Q99755|PI51A_HUMAN Phosphatidylinositol 4-phosphate 5-kinase type-1 alpha OS=Homo sapiens OX=9606 GN=PIP5K1A PE=1 SV=1
sp|P56537|IF6_HUMAN Eukaryotic translation initiation factor 6 OS=Homo sapiens OX=9606 GN=EIF6 PE=1 SV=1
sp|Q8NHW5|RLA0L_HUMAN 60S acidic ribosomal protein P0-like OS=Homo sapiens OX=9606 GN=RPLP0P6 PE=5 SV=1

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